基于杂交瘤技术的单克隆抗体制备

实验项目相关信息

1.实验方法与步骤要求

1.小鼠的处理:

免疫是单抗制备过程中的重要环节之一,其目的在于使B淋巴细胞在特异抗原刺激下分化、增殖,以利于细胞融合形成杂交细胞,并增加获得分泌特异性抗体的杂交瘤的机会。提前一周,取BALB/C小鼠进行免疫,用抗原物质加入不完全弗氏佐剂混合,腹腔注射,免疫小鼠。

 

图3. 免疫小鼠

2.小鼠滋养细胞(巨噬细胞)获取:

小鼠滋养细胞(巨噬细胞)获取:将小鼠带入超净工作台,腹面朝上进行解剖,充分暴露腹部。用镊子提起腹膜,剪开一个小口,向腹腔内注射入适量培养液,小心反复冲洗腹腔,吸出培养液至离心管中,反复冲洗2-3次,再离心洗涤1-2次(1000rpm,5min)。重悬细胞,进行细胞计数。配制HAT培养液,并重悬细胞,调整巨噬细胞浓度为2X105个/mL。取巨噬细胞悬液滴入96孔板,每孔0.1mL,二氧化碳培养箱培养。

 

图4. 小鼠滋养层细胞获取

3.脾脏B细胞获取:

取经过免疫的BALB/C小鼠,带入超净工作台,无菌解剖操作,取出脾脏,并将脾脏置入无菌PBS缓冲液中进行冲洗。再次将小鼠脾脏移入另一无菌培养皿中,用无菌注射器在小鼠脾脏多处戳出小孔,用总体积5mL左右的 PBS缓冲液将脾脏B细胞从脾脏中冲出,吸取B细胞悬液并转移至离心管中,离心(1000rpm,5min),收集细胞,弃上清,加入1640培养液,重悬细胞,重复离心(1000rpm,5min),洗细胞。洗涤细胞后,重悬细胞,利用血球计数板对脾细胞进行计数。取出适量骨髓瘤细胞置于离心管中,同样利用血球计数板进行细胞计数。

 

图5. 脾脏B细胞获取

4.细胞融合(1)

1)将计数后的B细胞和骨髓瘤细胞以10:1的比例混合,离心(1500rpm,5min),弃上清,取沉淀,取无血清1640培养液重悬细胞,洗细胞1-2次,得糊状细胞。将该细胞混合物转入37度水浴,吸取1mL PEG加入离心管中,边加入边混匀,1min之内加入全部PEG,并继续振荡1-1.5min。

 

图6. 细胞融合(1)

5.细胞融合(2)

加入预热无血清1640培养液,2min后加入1mL培养基、再5min加入4mL,5min加入5mL,5min加入19mL,使培养基和PEG总量达到30mL,在加入培养基的过程中,不断旋转离心管,轻柔的混合细胞。

 

图7. 细胞融合(2)

6.离心收集细胞

离心收集细胞(1000rpm,10min),吸出培养基,加入1mL不含有HAT的融合用培养基,

图8. 离心收集细胞

轻轻吹散细胞成小球,弄散细胞团块,加入培养基使细胞悬浮于30mL的融合培养基中。

7.融合细胞培养

在两个50mL的离心管中,分别加入10mL上述细胞悬液,补加培养基至48mL(无HAT,3管总量144mL)。将之前制备滋养细胞的96孔板取出,吸取出培养液,在每孔中加入融合细胞,每孔加入0.1mL细胞悬液进行培养。

 

图9. 融合细胞培养 

8.融合细胞的先择性培养

培养48小时后,每孔加入新鲜的选择性培养基(含2 X HAT)0.1mL,由此获得1 X HAT选择性培养基。每间隔4-5天,更换新鲜的培养基,随时进行观察检测,约2-5周后可见细胞克隆群,取出上清,以备ELISA检测抗体的生成及含量。

 

图10. 融合细胞的选择性培养 

9.融合细胞的鉴定及筛选

将抗原以pH 9.6的NaCO3-NaHCO3进行包被,每块酶标板以5-20 ug抗原为宜。每孔的包被体积为50-100 uL。37 ℃包被2 h或4 ℃包被过夜。倒掉抗原,拍干酶标板孔内液体,以0.5-1% PBS(用PBST溶)或5% 脱脂牛奶(PBST溶解)或1% 明胶(PBST溶解)于37 ℃封闭2 h或4 ℃封闭过夜。封闭完后,弃去孔内液体,拍干,加入待检测胞上清,每孔100 uL为宜。在每块板子上做好记号。37 ℃孵育1 h。孵育完一后,弃去孔内液体,拍干,以PBST洗3次,每次5min。根据二抗说明稀释好二抗,每孔加100 uL.37 ℃孵育1 h。  孵育完二抗后,弃去孔内液体,拍干,加入显色剂。待颜深时用终止液终止反应。用酶标仪读出各孔OD值,选择出阳性孔。

 

图11. 融合细胞的鉴定与筛选

10.抗体检测阳性孔细胞的扩大培养

对于抗体检测阳性孔的细胞须进行扩大培养,并冻存。获得的杂交瘤细胞进行细胞计数后,准确的进行系列稀释,直到每mL含有10个细胞,按照每孔接种0.1mL细胞悬液,使每孔含有1个细胞,以获得单克隆抗体细胞株,进行培养及冻存。

 

图12. 抗体检测阳性孔细胞的扩大培养

11.单克隆抗体的大量制备-腹水的制备

提前一周,取BALB/C小鼠进行免疫,用抗原物质加入不完全弗氏佐剂混合,腹腔注射,免疫小鼠。在注射佐剂后一周,将生长旺盛的杂交瘤细胞离心,弃去培养基,用PBS或者不完全培养基重悬后注射到小鼠腹腔,一般7-10天后就可以看到小鼠腹腔明显肿大,此时处死小鼠,采集腹水,离心除去细胞的成份,同时也去掉油脂(油脂的密度比较小,一般都漂浮在腹水表面,用枪吸出丢掉即可)。

 

图13. 单克隆抗体的大量制备—腹水的制备